Клинический анализ крови

О́бщий клини́ческий ана́лиз кро́ви (ОАК) — представляет собой базовое лабораторное исследование количественных и качественных характеристик форменных элементов крови[1][2]. Данное исследование используется для скрининга патологических состояний, первичной диагностики заболеваний, контроля течения болезней и эффективности лечебных мероприятий при воспалительных процессах, нарушениях гемостаза, анемиях[1][2].

Подсчёт форменных элементов крови в камере Горяева при оптической микроскопии
Подсчёт форменных элементов крови в камере Горяева при оптической микроскопии

В современной клинической практике исследование проводится на автоматических гематологических анализаторах[1][2]. Производительность большинства приборов составляет 100–120 проб в час при анализе нескольких десятков тысяч клеток в каждой пробе[1][2]. Автоматизированный подсчёт обеспечивает безопасность процедуры, точность измерений, высокую воспроизводимость данных; метод характеризуется информативностью и экономичностью, во многих случаях превосходя микроскопию мазков крови[1][2]. При наличии клинических показаний результаты могут быть маркированы как срочные (cito)[2].

Подготовка и проведение исследования

Для проведения анализа используют капиллярную или венозную кровь[3][4]. Венозную кровь берут из локтевой вены, капиллярную — из безымянного пальца руки[3][4]. Предпочтительным материалом является венозная кровь, поскольку забор капиллярной крови труднее стандартизировать; сильное сдавливание пальца может исказить результаты исследования[1][2]. При динамическом наблюдении рекомендуется использовать один тип биоматериала, так как показатели капиллярной и венозной крови различаются между собой[1][2].

Кровь желательно сдавать натощак в утренние часы (7:00–9:00)[5]. Следует избегать взятия крови непосредственно после физиотерапевтических процедур, рентгенологических и ультразвуковых исследований, физической нагрузки[5]. Не рекомендуется проводить забор крови во время инфузионной терапии[1][2]. При исходно нормальных показателях гемограммы повторные исследования проводят не чаще 1 раза в 5–7 дней, при нормальных значениях — не чаще 1 раза в 10 дней[2]. Динамический контроль желательно осуществлять в одной лаборатории для обеспечения сопоставимости результатов[1][2]. Сомнительные и «сигнальные» результаты требуют повторного исследования с новым взятием пробы[1][2]. При оценке референтных интервалов необходимо учитывать биологическую и аналитическую вариабельность показателей[1][2].

Методологические основы автоматизированного анализа

Современные гематологические анализаторы автоматически рассчитывают основные показатели: количество тромбоцитов (PLT), эритроцитов (RBC), лейкоцитов (WBC), а также производные индексы[1][6]. Концентрация лейкоцитов выражается в ×109/л[1][2].Приборы могут выполнять трёхпопуляционную (лимфоциты, нейтрофилы, клетки средних размеров) или пятипопуляционную (базофилы, нейтрофилы, моноциты, эозинофилы, лимфоциты) дифференцировку лейкоцитов[1][7].

Анализаторы генерируют предупредительные сигналы — «флаги», указывающие на присутствие незрелых гранулоцитов (IG) и палочкоядерных нейтрофилов (BAND)[1][8]. Пороговые значения для «флагов»: незрелые гранулоциты >3 % (IG), атипичные лимфоциты >5 % от числа всех лимфоцитов (DIFF), неправильные моноциты >3 %, бласты >1 % (BLAST), палочкоядерные нейтрофилы >12,5 % от всех лейкоцитов или >5 % от всех нейтрофилов (BAND), атипичные лимфоциты >5 % (VAR LYM)[1]. Также регистрируются ядросодержащие эритроциты (NRBC), незрелые и реактивные лимфоциты, тени Гумпрехта (Боткина-Гумпрехта), резистентные к гемолизу эритроциты (RRBC), малые лимфоциты объёмом <60 фл, фрагменты клеток, крупные тромбоциты и их агрегаты, признаки «старой» крови и апоптоза (NvWBC), ретикулоцитоз[1].

Показатели эритроцитарного ряда

Стандартный выход гематологических анализаторов включает следующие эритроцитарные показатели: RBC (количество эритроцитов), HGB (концентрация гемоглобина), HCT (гематокрит), MCV (средний объём эритроцита), MCH (среднее содержание гемоглобина в эритроците), MCHC (средняя концентрация гемоглобина в эритроците), RDW (показатель распределения эритроцитов по объёму)[1][2]. Референтные интервалы различаются для мужчин и женщин по нескольким параметрам[1][9].

Показатель Мужчины Женщины
Эритроциты (RBC), ×1012/л 4,0–5,0 3,9–4,7
Гематокрит (HCT), % 38–49 33–46
MCV, фл 80–100 80–100
MCH, пг 27,0–31,0 27,0–31,0
MCHC, г/л 300–380 300–380
Ретикулоциты, ‰ 2,0–10,0 2,0–10,0

Средний объём эритроцита (MCV) измеряется в фемтолитрах (фл); референтный интервал составляет 80–100 фл (по альтернативным данным — 80–95 фл)[1][2]. У мужчин этот показатель выше, чем у женщин[2]. MCV малочувствителен при смешанных анемиях и анемии хронических заболеваний; возможны ложнозавышенные значения при отсроченном исследовании (более 8 часов после забора крови), гиперосмолярности плазмы и частичном засорении апертуры прибора[1][2]. Среднее содержание гемоглобина в эритроците (MCH) вычисляется как отношение концентрации гемоглобина к количеству эритроцитов[1][10]. Этот показатель клинически эквивалентен цветовому показателю (ЦП = MCH × 0,03)[1]. Снижение MCH до значений 0,50–0,70 наблюдается при нарушении синтеза гемоглобина (порфирия, железодефицитная анемия, свинцовая интоксикация)[1]. Повышение MCH до уровня ≥1,10 характерно для гипотиреоза, макроцитарных и мегалобластных анемий, заболеваний печени, некоторых гемолитических анемий, метастатических поражений костного мозга, гипопластической фазы после острой кровопотери; повышение может наблюдаться при приёме противосудорожных средств, цитостатиков, гормональных контрацептивов[1].

Средняя концентрация гемоглобина в эритроците (MCHC) в норме составляет 300–380 г/л[1][10]. Повышенные значения (более 380 г/л) редко встречаются в клинической практике (врождённый сфероцитоз) и чаще указывают на ошибку в измерении MCV, HGB или HCT; в таких случаях требуется повторное исследование[1][2]. MCHC — один из наиболее стабильных гематологических показателей; рост MCHC при несоответствии HCT, HGB и MCV указывает на приборную или преаналитическую ошибку[1]. RDW характеризует степень анизоцитоза (разнородности размеров эритроцитов)[1][2]. RDW-CV составляет 11,5–14,5 %[1][2]. RDW-SD (в анализаторах Sysmex) имеет референтный интервал 37–47 фл; клинически значимым является значение более 60 фл[1]. При наличии в крови популяции эритроцитов с изменённым, но относительно однородным размером RDW может оставаться в пределах референсного интервала[1][2]. Морфологические изменения эритроцитов включают пойкилоцитоз (разная форма), анизоцитоз (разный размер) и полихромазию (разная окраска); RDW отражает неоднородность размеров клеток[1].

Ежедневная продукция ретикулоцитов составляет 3×109 клеток[1]. Созревание в костном мозге занимает 36–44 часа, дозревание в периферической крови — 24–30 часов[1]. Фракция незрелых ретикулоцитов (IRF) отражает реакцию эритропоэза на скрытую или острую кровопотерю[1]. Содержание гемоглобина в ретикулоцитах (Ret-Hb) в норме составляет 28–35 г/л; при Ret-Hb менее 28 г/л диагностируется железодефицитный эритропоэз; показатель не зависит от воспаления[1][11].

Анемии и их классификация

Согласно критериям Всемирной организации здравоохранения, анемией страдают около 2 миллиардов человек в мире[1]. Диагностические пороги: для мужчин — RBC <4,0×1012/л, HGB <130 г/л, HCT <39 %; для женщин — RBC <3,8×1012/л, HGB <120 г/л, HCT <36 %; для беременных — RBC <3,5×1012/л, HGB <110 г/л, HCT <33 %[1]. Целевая предоперационная концентрация гемоглобина[12] составляет менее 130 г/л для лиц обоего пола[1][13].

По эритроцитарным индексам анемии классифицируют на микроцитарные гипохромные (MCV менее 80 фл, MCH менее 27 пг, MCHC менее 320 г/л), нормоцитарные нормохромные (MCV 80–100 фл, MCH 27–32 пг, MCHC 320–370 г/л, RDW 11,5–14,5 %) и макроцитарные гиперхромные (MCV более 100 фл, MCH более 32 пг)[1][14]. Небольшое снижение MCV и MCH при нормальной концентрации гемоглобина и повышенном RDW указывает на латентный дефицит железа[1]. Рост RDW нередко предшествует изменениям других эритроцитарных параметров[1].

Сочетание показателей Вероятная патология
Низкий MCV + высокий RDW Дефицит железа, хронические заболевания
Нормальный MCV + нормальный RDW Хронические заболевания
Нормальный MCV + высокий RDW Острая кровопотеря, гемолиз вне криза
Высокий MCV + нормальный RDW Болезни печени
Высокий MCV + высокий RDW Апластическая анемия, дефицит витамина В12 или фолата, миелодиспластический синдром, миелофиброз, агглютинация эритроцитов, лейкоцитоз более 50×109/л

Изменения количества эритроцитов

Повышение количества эритроцитов наблюдается при истинной полицитемии[15], новообразованиях почек, болезни и синдроме Кушинга, воздействии кортикостероидов, водянке почечных лоханок[1]. Относительный эритроцитоз развивается при сгущении крови (приём диуретиков, ожоги, диарея).

Уменьшение числа эритроцитов происходит при снижении продукции в костном мозге, кровопотере, беременности, различных формах анемий, возврате тканевой жидкости при уменьшении отёков, гидремии (массивные инфузии), ускоренном разрушении эритроцитов[1][16]. При тяжёлых апластических, гемолитических и В12-дефицитных состояниях количество эритроцитов может снижаться до 1,6–1,0×1012/л[1].

Показатели лейкоцитарного ряда

Подсчёт количества лейкоцитов (WBC) выполняется в единицах объёма крови (×109/л)[1][2]. Референтный интервал составляет 4,0–9,0×109/л[1][2]. В зависимости от технической конфигурации анализатора возможна трёхпопуляционная дифференцировка (клетки средних размеров, нейтрофилы, лимфоциты) или пятипопуляционная дифференцировка (лимфоциты, нейтрофилы, моноциты, эозинофилы, базофилы)[1][17].

Тип лейкоцитов Абсолютные значения, ×109/л Относительные значения, %
Сегментоядерные нейтрофилы 2,000–5,500 47,0–72,0
Эозинофилы 0,020–0,300 0,5–5,0
Базофилы 0–0,065 0–1,0
Моноциты 0,090–0,600 3,0–11,0
Лимфоциты 1,200–3,000 19,0–37,0

Автоматические анализаторы не обеспечивают аппаратную дифференцировку нейтрофилов в зависимости от степени их зрелости, но при этом способны генерировать предупредительные сигналы («флаги») при обнаружении созревающих гранулоцитов (IG) и палочкоядерных нейтрофилов (BAND)[1][18]. Ключевым достоинством автоматизированного определения лейкоцитарной формулы служит повышенная точность получаемых данных, обусловленная анализом значительного числа клеточных элементов[1][17]. Микроскопическое исследование позволяет врачу провести полноценную оценку морфологических характеристик клеток.

Лейкоцитоз

Под термином «лейкоцитоз» понимают повышение концентрации лейкоцитов в крови свыше 9,0×109/л[1][2]. В клинической практике выделяют несколько форм данного состояния, классифицируемых по доминирующему типу клеток: лимфоцитарную, нейтрофильную, моноцитарную и эозинофильную[1].

Нейтрофильная форма лейкоцитоза характеризуется увеличением количества нейтрофилов выше 6,0×109/л и может возникать при следующих состояниях: активация лейкопоэза — наблюдается при бактериальных инфекциях (аппендицит, абсцесс, остеомиелит, пневмония, ангина, отит, скарлатина, пиелонефрит, дифтерия, сепсис, менингит, перитонит); перераспределительные механизмы — развиваются на фоне стресса, физической нагрузки, болевого синдрома, физиотерапевтических процедур, в послеоперационном периоде, при воздействии контрастных температур (горячие или холодные ванны), применении глюкокортикоидов; воспалительно-деструктивные процессы и некроз тканей — возникают при травматических повреждениях, эмпиеме плевры, злокачественных новообразованиях, инфаркте миокарда, ожоговых поражениях, ревматической атаке, хирургических вмешательствах; гипоксические состояния — характерны для хронических и острых форм анемий; неопластические процессы — отмечаются при лейкозах различной этиологии; эндогенные интоксикации — выявляются при подагре, ацидозе, уремии, эклампсии, синдроме Кушинга[1][19].

Штатив с капиллярными стеклянными трубками для определения скорости оседания эритроцитов. Из-за разной скорости оседания эритроцитов уровень эритроцитов (красный) различный в пробах крови от разных людей. Метод Панченкова
Штатив с капиллярными стеклянными трубками для определения скорости оседания эритроцитов. Из-за разной скорости оседания эритроцитов уровень эритроцитов (красный) различный в пробах крови от разных людей. Метод Панченкова

Эозинофилия (более 0,300×109/л) характерна для иммунодефицитов (синдром Вискотта–Олдрича), паразитарных инвазий (токсокароз, аскаридоз, эхинококкоз, трихинеллёз, анкилостомидоз, шистосоматоз, описторхоз, филяриатоз, лямблиоз, стронгилоидоз), сенсибилизации (аллергические дерматиты, лекарственная аллергия, инфекционная эозинофилия, бронхиальная астма, аллергический ринит), инфекций (хламидийная пневмония, туберкулёз), опухолевой пролиферации (лимфогранулематоз, гиперэозинофильный синдром, острые и хронические лейкозы, злокачественные опухоли с метастазами и некрозом, лимфомы), системных заболеваний соединительной ткани (эозинофильный фасциит, узелковый периартериит, системная склеродермия, ревматоидный артрит), интерстициальных болезней лёгких (лёгочный эозинофильный инфильтрат — болезнь Лёффлера, саркоидоз, эозинофильный плеврит, гистиоцитоз из клеток Лангерганса, хроническая эозинофильная пневмония). Базофилия (более 0,1×109/л) встречается при хронических миелопролиферативных заболеваниях, аллергических реакциях, в ранней фазе ревматизма. При тучноклеточном лейкозе наблюдается рост тучных клеток в костном мозге и периферической крови[1][19][20].

Моноцитоз (более 0,7×109/л) может быть опухолевым (хронические и острые моноцитарный и миеломоноцитарный лейкозы) и реактивным (сопутствует раку лёгких и надпочечников, подострый септический эндокардит, период реконвалесценции, вирусные, протозойные, грибковые, риккетсиозные инфекции; узелковый периартериит, хронические гранулёматозные инфекции — саркоидоз, туберкулёз, бруцеллёз, сифилис; ревматоидный артрит, неспецифический язвенный колит, системная красная волчанка). Лимфоцитоз (более 3×109/л) подразделяется на опухолевый (лимфопролиферативные заболевания) и реактивный (бактериальные инфекции с гранулёмами — сифилис, туберкулёз, бруцеллёз; вирусные инфекции — цитомегаловирусная инфекция, инфекционный мононуклеоз, острый и хронический вирусный гепатит, инфекционный лимфоцитоз, коклюш, ветряная оспа, ВИЧ, корь, краснуха; иммунопатологические процессы — аутоиммунные нейтропении; паразитарные инфекции — токсоплазмоз)[1][19].

Нейтропения и агранулоцитоз

Нейтропенией называют снижение количества нейтрофилов менее 2,0×109/л; агранулоцитозом — снижение менее 0,5×109/л[1][21]. Причины нейтропении включают перераспределение клеток (синдром Фелти, анафилактический шок), функциональные факторы (цирроз печени, угнетение нейтропоэза бактериальными токсинами; сыпной тиф, вирусные и риккетсиозные инфекции — вирусный гепатит, брюшной тиф, бруцеллёз, паратифы, подострый септический миокардит, туляремия, милиарный туберкулёз, хронический сепсис, ОРВИ, тяжёлые инфекции, грипп), органические поражения (недостаточность нейтропоэза при миелодиспластическом синдроме, острых лейкозах, хронических лимфолейкозах; апластическая анемия; дефицит витамина В12), иммунное разрушение (изоиммунные реакции у новорождённых, лекарственная гиперчувствительность; аутоиммунные заболевания — ревматоидный артрит, системная красная волчанка), ареактивные состояния (алиментарная дистрофия, гипотония, длительное недосыпание и стресс, голодание)[1][21].

Риск инфекционных осложнений существенно возрастает при количестве нейтрофилов менее 0,5×109/л[1][22]. При агранулоцитозе даже небольшое число незрелых гранулоцитов в периферической крови служит диагностическим критерием инфекции[1].

Показатели тромбоцитов

Количество тромбоцитов (PLT) в норме составляет 150–400×109/л[1][23]. Средний объём тромбоцитов (MPV) находится в диапазоне 7,4–10,4 фл (по альтернативным данным — 7–10 фл)[1][2]. Тромбокрит (PCT) имеет референтный интервал 0,15–0,40 % (по альтернативным данным — 0,108–0,282)[1][23]. Показатель распределения тромбоцитов по объёму (PDW) составляет 10–20 %[1][2]. P-LCR отражает долю больших тромбоцитов[1][24].

Показатель Референтный интервал
Средний объём тромбоцитов (MPV), фл 7,4–10,4
Тромбокрит (PCT), % 0,15–0,40
Показатель распределения (PDW), % 10–20

Наиболее точную информацию о количестве тромбоцитов и их параметрах можно получить на гематологическом анализаторе при условии его исправности, удовлетворительных результатов контрольных материалов и соблюдения правил преаналитического этапа. Во избежание спонтанной агрегации тромбоцитов рекомендуется проводить исследование в промежутке 0–5 минут или через 1 час после взятия крови (период адаптации тромбоцитов к ЭДТА)[2].

Тромбоцитоз и тромбоцитопения

В подавляющем большинстве случаев (свыше 90 %) диагностируемое повышение тромбоцитов носит реактивный (вторичный) характер[1][2][25]. Степень выраженности тромбоцитоза не может использоваться в качестве дифференциально-диагностического признака для установления первичной или вторичной природы патологических изменений[1][26].

Транзиторное повышение числа тромбоцитов перераспределительного типа развивается как ответная реакция на болевую стимуляцию[1]. Увеличение концентрации тромбоцитов регистрируется после интенсивной физической активности, травматических повреждений, кровопотери, хирургических операций, а также при опухолевых процессах (неоплазиях), инфекционно-воспалительных заболеваниях, железодефицитных состояниях[1][26].

У лиц без патологии установлена нелинейная обратная зависимость между размером и численностью циркулирующих в кровотоке тромбоцитов[1]. На фоне тромбоцитоза обычно выявляется закономерность в виде уменьшения среднего объёма тромбоцитов (MPV)[1]. Повышение тромбокрита (PCT) ассоциировано с возрастанием вероятности развития тромботических осложнений[1]. Показатель распределения тромбоцитов по объёму (PDW) обычно существенно увеличивается после гемотрансфузий, эпизодов кровотечения, травматических повреждений[1].

Тромбоцитопенией называют снижение количества тромбоцитов менее 150×109/л[1][2]. Различают ложную и истинную, первичную и вторичную формы[1][27]. Степень I характеризуется уровнем менее 150–100×109/л; степень II — менее 100–50 (30)×109/л; степень III — менее 50 (30)×109/л[1]. Для больших инвазивных вмешательств безопасным порогом считается 50–100×109/л[1][27]. Риск спонтанных и хирургических кровотечений существенно возрастает при снижении количества тромбоцитов менее 20×109/л[1][27]. Псевдотромбоцитопения чаще индуцирована солями ЭДТА (особенно при низких температурах); на анализаторе регистрируется заниженное количество тромбоцитов, в мазке крови выявляются агрегаты[1][28]. Подтверждение диагноза требует микроскопии мазка и повторного забора крови на сульфате магния или цитрате натрия[1][28]. Наиболее точен подсчёт на анализаторе при соблюдении правил преаналитического этапа[1][2]. Наследственные формы тромбоцитопении включают синдром Вискотта–Олдрича (очень малый объём тромбоцитов, MPV менее 4 фл) и синдром Бернара–Сулье (гигантские тромбоциты, MPV ≥10–20 фл)[2].

Прокол кожи пальца одноразовым автоматическим скарификатором в пластиковом корпусе
Прокол кожи пальца одноразовым автоматическим скарификатором в пластиковом корпусе

Скорость оседания эритроцитов

Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) измеряется методами Вестергрена и Панченкова[1][2][29]. По методу Панченкова референтные значения составляют 1–10 мм/ч для мужчин и 2–15 мм/ч для женщин[1][2][29]. По методу Вестергрена (венозная кровь) для лиц младше 50 лет нормальные значения составляют 2–15 мм/ч у мужчин и 2–20 мм/ч у женщин; для лиц старше 50 лет — 2–20 мм/ч у мужчин и 2–30 мм/ч у женщин[1][2][29]. Клинико-диагностические лаборатории активно переходят на метод Вестергрена; автоматические анализаторы СОЭ повышают воспроизводимость результатов и снижают случайную ошибку[1][2][30].

Дополнительные референтные значения: мужчины младше или равно 60 лет — не более 8 мм/ч; новорождённые — 0–2 мм/ч; дети младше 6 лет — 12–17 мм/ч; мужчины старше 60 лет — не более 15 мм/ч; женщины младше или равно 60 лет — не более 12 мм/ч; женщины старше 60 лет — не более 20 мм/ч[1]. Приём пищи может повышать СОЭ до 25 мм/ч, беременность — до 45 мм/ч[1]. СОЭ является неспецифическим показателем, чаще отражающим диспротеинемию[1]. Повышение наблюдается при деструкции соединительной ткани, воспалении, злокачественных опухолях, иммунных нарушениях[1]. У 5–10 % здоровых людей СОЭ изменена без выявленного заболевания[1]. Небольшое повышение у пожилых людей не имеет установленной диагностической ценности[1].

Преаналитические и аналитические погрешности

Ложное повышение количества лейкоцитов (WBC) возникает при присутствии гепарина, наличии криоглобулинемии, негемолизированных эритроцитов, эритрокариоцитов, агрегатов и макроформ тромбоцитов, моноклональных парапротеинемий, исследовании не натощак[1]. Ложное снижение WBC наблюдается при недостаточном перемешивании пробы, наличии сгустков и микросгустков, апоптозе клеток или «старой» крови, разведении крови инфузионными растворами[1].

Выявление ядросодержащих эритроцитов, или нормобластов (NRBC), в периферической крови новорождённых детей в незначительных количествах считается физиологической нормой[1][31]. Повышенное содержание данных клеточных элементов характерно для недоношенных младенцев, гемолитической болезни новорождённых, внутриутробной гипоксии[1]. У взрослых пациентов циркуляция нормобластов в периферической крови типична для септических состояний, метастатического поражения костной ткани, постгемотрансфузионного периода (после массивного переливания крови), выраженной гипоксии[1][32].

Важной особенностью автоматизированного анализа является то, что гематологические анализаторы идентифицируют нормобласты как лейкоцитарные клетки, что приводит к ложному завышению показателя WBC и количества лимфоцитов[1][2][32]. При подобных ситуациях требуется микроскопический подсчёт нормобластов в мазке крови из расчёта на 100 лейкоцитов[1][32]. При обнаружении 10 нормобластов лаборантом-исследователем выполняется мануальная корректировка реального содержания лейкоцитов[1][32].

Показатели средней концентрации гемоглобина в эритроците (MCHC) выше 380 г/л встречаются нечасто (характерны для врождённого сфероцитоза) и в большинстве ситуаций свидетельствуют о погрешности определения гематокрита (HCT), гемоглобина (HGB) или среднего объёма эритроцита (MCV)[1]. В подобных обстоятельствах рекомендовано повторное лабораторное исследование[1].

При регистрации анализатором высоких значений тромбоцитов целесообразно провести визуальную микроскопию мазка для исключения присутствия микроцитарных эритроцитов (с малым объёмом MCV) или их фрагментированных форм, морфологических аномалий тромбоцитов или прочих клеточных элементов крови[1][33]. При любых вариантах тромбоцитоза обязательным является сопоставление лабораторных данных с анамнестическими сведениями, клиническими проявлениями заболевания и результатами дополнительных лабораторных исследований[1].

Референтные интервалы и их клиническое значение

Определение референтных интервалов осуществляется посредством современного статистического программного обеспечения, при этом данные диапазоны могут демонстрировать значительные различия между странами и регионами[1].

Методологической основой установления референтных интервалов для большей части лабораторных параметров служит принцип, при котором определяемый диапазон охватывает показатели 95,0–97,5 % условно здоровой популяции[1][34]. Референтные интервалы не являются индикаторами патологических состояний[1][35]. Интерпретация результатов лабораторного исследования требует дифференцированного подхода с обязательным учётом потенциальной аналитической или биологической вариабельности, включающей циркадные ритмы, половую принадлежность, гестационный период, возрастные особенности, уровень физической активности[1][36].

Для лабораторных тестов, имеющих определённые в клинических рекомендациях пороговые критерии, рекомендуется включение в бланк результатов пороговых значений наряду с референтными интервалами либо в качестве их альтернативы[1]. Выбор применяемых референтных интервалов находится в зоне профессиональной ответственности специалистов клинической лабораторной диагностики[1].

Литература

  • Дядя Г. И. и др. Раздел «Общий анализ крови» // Универсальный справочник практикующего врача. — Воронеж: Научная книга, 2017. — 512 с. — ISBN 978-5-521-05469-5.
  • Кишкун А. А. Глава 2. Гематологические исследования // Клиническая лабораторная диагностика. Учебное пособие. — М.: ГЭОТАР-Медиа, 2015. — 976 с. — ISBN 978-5-9704-3518-2.
  • Назаренко Г. И., Кишкун А. А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. — М.: Медицина, 2006. — 544 с. — ISBN 5-225-04579-0.
  • Ольховик А. Ю., Садовников П. С., Васильев А. В., Денисов Д. Г. Сравнительная оценка показателей общеклинического исследования венозной и капиллярной крови. — Т. 18. — С. 113–122.
  • Татков О. В., Ступин Ф. П. Общий анализ крови. Информационный сборник. — М.: Издательские решения, 2016. — 72 с. — ISBN 978-5-4474-7600-7.

Примечания

  1. ↑ 1,000 1,001 1,002 1,003 1,004 1,005 1,006 1,007 1,008 1,009 1,010 1,011 1,012 1,013 1,014 1,015 1,016 1,017 1,018 1,019 1,020 1,021 1,022 1,023 1,024 1,025 1,026 1,027 1,028 1,029 1,030 1,031 1,032 1,033 1,034 1,035 1,036 1,037 1,038 1,039 1,040 1,041 1,042 1,043 1,044 1,045 1,046 1,047 1,048 1,049 1,050 1,051 1,052 1,053 1,054 1,055 1,056 1,057 1,058 1,059 1,060 1,061 1,062 1,063 1,064 1,065 1,066 1,067 1,068 1,069 1,070 1,071 1,072 1,073 1,074 1,075 1,076 1,077 1,078 1,079 1,080 1,081 1,082 1,083 1,084 1,085 1,086 1,087 1,088 1,089 1,090 1,091 1,092 1,093 1,094 1,095 1,096 1,097 1,098 1,099 1,100 1,101 1,102 1,103 1,104 1,105 1,106 1,107 1,108 Сачилович Д. С., Шумак О. А., Пугачева Ж. Н., Лукьяненко Е. П., Кляпец Т. П. Интерпретация показателей крови на автоматическом гематологическом анализаторе. — Гомель: ГУ «РНПЦ РМиЭЧ», 2018. — 27 с.
  2. ↑ 2,00 2,01 2,02 2,03 2,04 2,05 2,06 2,07 2,08 2,09 2,10 2,11 2,12 2,13 2,14 2,15 2,16 2,17 2,18 2,19 2,20 2,21 2,22 2,23 2,24 2,25 2,26 2,27 2,28 2,29 2,30 2,31 2,32 2,33 2,34 2,35 2,36 Николенко Л., Николенко Е., Головнева Е. и др. Общий анализ крови: современное прочтение // Врач. — 2020. — № 1.
  3. ↑ 3,0 3,1 Национальный стандарт РФ ГОСТ Р 53079.4-2008 «Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа».
  4. ↑ 4,0 4,1 «ГОСТ Р 59778–2021. Национальный стандарт Российской Федерации. Процедуры взятия проб венозной и капиллярной крови для лабораторных исследований» — Утв. и введён в действие Приказом Росстандарта от 21.10.2021 № 1212-ст. (2022).
  5. ↑ 5,0 5,1 Бражникова О. В., Гавеля Н. В., Майкова И. Д. Типичные ошибки на преаналитическом этапе проведения лабораторных исследований // Consilium Medicum. Педиатрия (прил.). — 2017. — № 4. — С. 84–90.
  6. ↑ DxH 900 & 690T Hematology Analyzers: Advanced Technology Casebook. — Beckman Coulter Diagnostics, 2023. — 116 с.
  7. ↑ "context"%3A"archive_view_restricted"%2C"page"%3A"read"%2C"action"%3A"copy"%2C"logged_in"%3Atrue%2C"platform"%3A"web"%7D BC-5150. Автоматический гематологический анализатор. Mindray.
  8. ↑ Hematology Case Study — IG Present #2 (англ.). Sysmex America, Inc..
  9. ↑ Цвиренко С. В. Избранные вопросы клинической лабораторной диагностики в подготовке врача. — Екатеринбург: Изд-во «ИИЦ «Знак качества», 2023. — С. 57–58. — 174 с. — ISBN 978-5-89895-901-2.
  10. ↑ 10,0 10,1 Егорова Е. Н., Пустовалова Р. А., Горшкова М. А. Клинико-диагностическое значение эритроцитарных индексов, определяемых автоматическими гематологическими анализаторами // Верхневолжский медицинский журнал. — 2014. — Т. 12, № 3. — С. 34–41.
  11. ↑ Пшеничная К. И. и соавт. Определение гемоглобина ретикулоцитов (Ret-Hb) позволяет раньше выявить истинный дефицит железа у детей // Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. — 2020. — Т. 19, № 3. — С. 32–35.
  12. ↑ Shander A., Corwin, H., et al. Recommendations From the International Consensus Conference on Anemia Management in Surgical Patients (англ.) // Annals of Surgery. — 2023. — Vol. 277, no. 4. — P. 581–590.
  13. ↑ Трухан Д. И., Юренев Г. Л., Чусова Н. А. Железодефицитная анемия: актуальные аспекты диагностики и лечения в реальной клинической практике терапевта // Терапия. — 2019. — № 1.
  14. ↑ Трост А. М. Современные аспекты клинического анализа крови (презентация).
  15. ↑ Liesveld J. Истинная полицитемия // MSD Manuals. — 2023.
  16. ↑ Кулагин А. Д. Гемолитические анемии. — СПб., 2020.
  17. ↑ 17,0 17,1 Долгов В. В. Клиническая лабораторная диагностика: учебник. — М.: ФГБОУ ДПО РМАНПО, 2016. — 668 с. — ISBN 978-5-7249-2608-9.
  18. ↑ McFarlane A., et al. Introducing immature granulocytes (IG) in a proficiency testing program as a new parameter on automated hematology analyzers (англ.) // IQMH. — 2014.
  19. ↑ 19,0 19,1 19,2 Крылов А. А. Принципы трактовки клинического анализа крови. Сообщение 1. Лейкоциты // Вестник Санкт-Петербургской медицинской академии последипломного образования Росздрава. — 2009. — № 2. — С. 76–82.
  20. ↑ Liesveld J., Spivak J. L. Эозинофилия. Справочник MSD (2024).
  21. ↑ 21,0 21,1 Клинические рекомендации «Приобретённые нейтропении» (утв. Минздравом России) (2018).
  22. ↑ Dale D. C. Нейтропения. MSD Manuals (2025).
  23. ↑ 23,0 23,1 Ali U., Gibbs R., Knight G., Tsitsikas D. Sex-divided reference intervals for mean platelet volume, platelet large cell ratio and plateletcrit using the Sysmex XN-10 automated haematology analyzer in a UK population (англ.) // Hematology, Transfusion and Cell Therapy. — 2018. — Vol. 41, no. 2. — P. 153–157.
  24. ↑ Chen Q., Chen Y., Zhang Y., et al. Prognostic Impact of Platelet-Large Cell Ratio in Myelodysplastic Syndromes (англ.) // Frontiers in Oncology. — 2022. — Vol. 12.
  25. ↑ Rokkam V. R. Secondary Thrombocytosis (англ.). StatPearls (2024).
  26. ↑ 26,0 26,1 Sulai N. H., Tefferi A. Why Does My Patient Have Thrombocytosis? (англ.) // Hematology/Oncology Clinics of North America. — 2012. — Vol. 26, no. 2. — P. 285–301. — doi:10.1016/j.hoc.2012.01.003.
  27. ↑ 27,0 27,1 27,2 Рыков И. В., Фатеева А. В., Феоктистова П. С., Зуков Р. А., Кузин С. О. Практические рекомендации по профилактике и лечению тромбоцитопении, индуцированной противоопухолевой лекарственной терапией. Практические рекомендации RUSSCO, часть 2 // Злокачественные опухоли. — 2024. — № 14(3s2). — С. 71–82.
  28. ↑ 28,0 28,1 Поляков А. С., Гончарова Е. В., Бологов С. Г. и др. Современное состояние проблемы ЭДТА-ассоциированной псевдотромбоцитопении, значение в патогенезе полиморфизма в гене тромбоцитарного рецептора к фибриногену // Гены & клетки. — 2016. — Т. XI, № 3. — С. 123–128.
  29. ↑ 29,0 29,1 29,2 Никулина Н. А. Синдром ускоренного СОЭ. — Гомель: ГомГМУ. — 33 с.
  30. ↑ Kratz A., Plebani M., Peng M., Lee Y. K., McCafferty R., Machin S. J. ICSH recommendations for modified and alternate methods measuring the erythrocyte sedimentation rate (англ.). International Council for Standardization in Haematology (ICSH) (2017).
  31. ↑ Bedrick A. Nucleated red blood cells and fetal hypoxia: a biologic marker whose ‘timing’ has come? (англ.) // Journal of Perinatology. — 2014. — Vol. 34. — P. 85–86.
  32. ↑ 32,0 32,1 32,2 32,3 Constantino B. T., Rivera G. K. Q. Cutoff Value for Correcting White Blood Cell Count for Nucleated Red Blood Cells: What is it? Why is it Important? (англ.) // Laboratory Medicine. — 2019. — Vol. 50. — P. e82–e90.
  33. ↑ Zandecki M., Geneviève F., Gérard J., Godon A. Spurious counts and spurious results on haematology analysers. Part I: platelets (англ.) // International Journal of Laboratory Hematology. — 2007. — Vol. 29, no. 1. — P. 4–20.
  34. ↑ Ichihara K., Ozarda Y., Barth J. H., et al. A global multicenter study on reference values: 1. Assessment of methods for derivation and comparison of reference intervals (англ.) // Clinica Chimica Acta. — 2017. — Vol. 467. — P. 70–82.
  35. ↑ Евгина С.А., Савельев Л.И. Современные теория и практика референтных интервалов // Лабораторная служба. — 2019. — № 8(2). — С. 36–44.
  36. ↑ Omuse G., Kagotho E., Wambua C., et al. Determination of reference intervals for common chemistry and immunoassay tests for Kenyan adults based on an internationally harmonized protocol and up-to-date statistical methods (англ.) // PLOS ONE. — 2020. — Vol. 15, no. 7.

Ссылки

Источник — https://znanierussia.ru/articles/index.php?title=Клинический_анализ_крови&oldid=2157165